全自动跑步机是一种传送带装置，具有可设置调节的速度坡度，可以在实验动物身上进行强制运动训练和准确的疲劳测试。

疲劳是许多疾病和机体紊乱的常见症状，且其发生发展机制及治疗手段并未得到全面揭示。临床前疲劳实验可以提高目前对啮齿类动物疲劳样行为和其他运动模式的深入理解，并有助于研究和开发临床疲劳相关的治疗方案。

Ugo Basile全自动动物跑步机可用于各疾病模型中大小鼠运动疲劳实验，设备以传动带跑道为基础，通过设置传动带速度和跑道倾斜度，对大小鼠进行强迫运动训练和准确的疲劳测试。所有参数设置均可在仪器的触摸屏或配套软件上完成，方便快捷，触屏还能够监测实验进度，显示实验结果，方便实时观察数据，修正实验设计。

设备主体由驱动电机、传动带、跑道、电刺激器和触摸控制屏构成。大、小鼠实验前适应一定时间后，通过触摸屏或配套软件设置好传动带速度和跑道倾斜角度，将动物放入跑道内，一定时间后，动物会出现疲劳停留在跑道末端，设备自动记录跑步模式、疲劳时间、电刺激次数等参数。

优势特点：

一、可预设电刺激参数，组件可拆卸更换

动物为受迫性无法进行其他运动，测试过程中可能出现疲劳或停留等情况，需要提供电刺激来激励动物继续跑步。电刺激强度、频率和时间可进行预设，适用于大小鼠跑道且输出稳定可靠。

二、大小鼠通用，跑道倾斜角度可预设

跑道倾斜角度可调，从-25°至+25°，步进5°，大鼠跑道为3通道，小鼠为6通道，并可任意切换。除跑道组件外，其余硬件为大、小鼠测试时通用。与同类设备相比，Ugo Basile全自动动物跑步机具有占用空间小，噪音低，运行稳定等特点。

三、可视化操控界面，运行过程全自动化

触摸屏实时显示电流参数和跑步模式，以及每个通道动物测试时间、跑步距离和受到的电击次数。测试过程自动运行记录无需人为暂停，每个通道的测试结果都可以在屏幕中浏览。

跑步模式：匀速、匀加速、自定义多阶段

电流强度：0-2mA，频率选择：1、2或3Hz

四、优势！软件可自定义多个跑步阶段

全新的X-PAD软件提供了一个用户友好的界面来设置多阶段跑步模式，各阶段设置自动化无缝连接，此功能可满足研究者多元实验设计需求。跑步机的实验数据可通过U盘导出成表格数据。

五、具有丰富组件选择，设备扩展性强

Ugo Basile设计的电刺激+吹气刺激两用型号可满足实验人员对动物无害化刺激的需求。

多功能小鼠跑道：可拆卸透明盖6通道小鼠跑道为系绳动物设计，用于光遗传、电生理和监护仪等设备同步记录跑步状态下的生理参数。

应用领域：

全自动动物跑步机可用于建立动物运动疲劳模型，运动对生理和病理的机制改变，运动与代谢，运动与心脑血管病及神经系统疾病相关性研究。以及促进运动训练的科学化、运动疗法在疾病康复中合理有效的应用。

参考文献：

1.Lin Y, Li F, Huang L, et al. eIF3 Associates with 80S Ribosomes to Promote Translation Elongation, Mitochondrial Homeostasis, and Muscle Health. Mol Cell. 2020;79(4):575-587.e7. doi:10.1016/j.molcel.2020.06.003

2.Li Y, Zhang Y, Hu Q, et al. Functional significance of gain-of-function H19 lncRNA in skeletal muscle differentiation and anti-obesity effects. Genome Med. 2021;13(1):137.  doi:10.1186/s13073-021-00937-4

3.Basile I, Da Silva A, El Cheikh K, et al. Efficient therapy for refractory Pompe disease by mannose 6-phosphate analogue grafting on acid α-glucosidase. J Control Release. 2018;269:15-23. doi:10.1016/j.jconrel.2017.10.043

4.Wang BY, Hsiao AW, Wong N, Chen YF, Lee CW, Lee WYW. Is dexamethasone-induced muscle atrophy an alternative model for naturally aged sarcopenia model?. J Orthop Translat. 2022;39:12-20. Published 2022 Dec 20. doi:10.1016/j.jot.2022.11.005

5.Brunetti D, Bottani E, Segala A, et al. Targeting Multiple Mitochondrial Processes by a Metabolic Modulator Prevents Sarcopenia and Cognitive Decline in SAMP8 Mice. Front Pharmacol. 2020;11:1171. doi:10.3389/fphar.2020.01171

6.Tutakhail A, Nazari QA, Khabil S, Gardier A, Coudore F. Muscular and mitochondrial effects of long-term fluoxetine treatment in mice, combined with physical endurance exercise on treadmill. Life Sci. 2019;232:116508. doi:10.1016/j.lfs.2019.05.064

7.Abelanet A, Camoin M, Rubin S, et al. Increased Capillary Permeability in Heart Induces Diastolic Dysfunction Independently of Inflammation, Fibrosis, or Cardiomyocyte Dysfunction. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2022;42(6):745-763. doi:10.1161/ATVBAHA.121.317319

8.Su LY, Huang WC, Kan NW, Tung TH, Huynh LBP, Huang SY. Effects of Resveratrol on Muscle Inflammation, Energy Utilisation, and Exercise Performance in an Eccentric Contraction Exercise Mouse Model. Nutrients. 2023;15(1):249. doi:10.3390/nu

9.Boulghobra D, Dubois M, Alpha-Bazin B, et al. Increased protein S-nitrosylation in mitochondria: a key mechanism of exercise-induced cardioprotection. Basic Res Cardiol. 2021;116(1):66. doi:10.1007/s00395-021-00906-3

10.García-Merino JA, de Lucas B, Herrera-Rocha K, et al. Flavanol-Rich Cocoa Supplementation Inhibits Mitochondrial Biogenesis Triggered by Exercise. Antioxidants (Basel). 2022;11(8):1522. doi:10.3390/antiox

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